Informations aux professionnels

La fiabilité des résultats de laboratoire ne dépend pas uniquement d’une technique d’analyse correcte. Une préparation dans les règles de l’art doit précéder la phase analytique. Cette phase est appelée pré-analytique. Elle comporte la préparation du patient, le choix du moment du prélèvement, le choix du tube, l'acte de prélèvement, l’identification, le remplissage du bon de demande, la conservation jusqu’au moment de l’analyse, le transport...

Les informations fournies sur ce site ont pour but essentiel d’informer le professionnel sur les principales recommandations permettant de maîtriser au mieux cette phase. Ce guide concerne les laboratoires de la SEL Biopteam. Les informations que vous y trouverez s’appliquent aux laboratoires de notre structure pour une liste exhaustive d’analyses (référentiel des analyses).

• Réaliser un lavage simple des mains ou une désinfection par friction avec un produit hydro alcoolique
• Installer la personne confortablement.
• Réaliser l’asepsie selon le protocole de l’établissement ou à défaut à l’aide du tampon alcoolique fourni.
• Réaliser le prélèvement en respectant l’ordre des tubes et le volume de prélèvement (voir ci-dessous)
• Homogénéiser les tubes par des retournements lents.
• Écrire lisiblement et sans faute d’orthographe l’identification précise sur chaque tube ou coller l’étiquette lorsque le patient en possède.
• Compléter la feuille de renseignements.

Certaines pratiques peuvent influer sur les paramètres biologiques. Il est donc conseillé :

• de ne pas poser le garrot plus de 3 minutes,
• de ne pas utiliser des aiguilles trop fines (aiguilles vertes de préférence ou noires en cas de patient difficile à piquer),
• de signaler un prélèvement difficile,
• de ne jamais prélever un bras porteur d’une perfusion

Ordre de prélèvement :

1. Flacons pour hémocultures
2. Tube hémostase (citrate) bouchon bleu en respectant scrupuleusement le niveau de remplissage Homogénéiser par 3 à 4 retournements lents.
3. Tube avec séparateur de sérum (SST II) bouchon jaune et CAT (silice) rouge. Homogénéiser par 5 à 6 retournements lents.
4. Tube héparine bouchon vert foncé (tube LH)et bouchon vert pâle (tube PST2) avec séparateur. Homogénéiser par 8 à 10 retournements lents.
5. Tube EDTA bouchon violet. Homogénéiser par 8 à 10 retournements lents.
6. Tube glucose (tube avec anti glycolytique) bouchon gris. Homogénéiser par 8 à 10 retournements lents.
7. Puis les autres tubes (ACD, VS, Aprotinine) et tube thrombine toujours en dernier. Utilisés pour la biologie spécialisée. Homogénéiser par 8 à 10 retournements lents.

• Respecter les précautions de soins et d’hygiène.
• Privilégier les prélèvements profonds chaque fois que possible.
• Prélever une quantité ou volume suffisant d’échantillon.
• En fonction du délai d’acheminement prélever sur le bon support.
• Identifier correctement le prélèvement.
• Consulter les recommandations spécifiques de chaque prélèvement dans le référentiel des analyses.

L'identification des prélèvements est un point très important merci de consulter le document ci-dessous et de respecter scrupuleusement les consignes.

• Consignes pour l'identification des prélèvements

Le bon de demande doit porter les mentions suivantes :

• Date et heure du prélèvement / nom du préleveur
• Nom de naissance, sexe, prénom, Nom de usuel (éventuelement), date de naissance, l’adresse et le numéro de téléphone (L’utilisation « d’étiquettes patient du laboratoire » permet une identification complète du patient).
• La ou les analyses demandées et/ou l’ordonnance
• Les consignes de transmission des résultats
• Les renseignements cliniques ou biologiques éventuels détaillés dans les chapitres concernés (bactériologie, médicaments…)

En remarque, tout commentaire qui vous semble nécessaire.

Il incombe au prescripteur et/ou au préleveur de nous transmettre toutes les informations cliniques qui leurs paraissent pertinents pour la réalisation et l'interprétation des analyses.

Il est notamment nécessaire de nous indiquer :

En cas de dosages hormonaux :

• La date des dernières règles

En cas de dosage des béta hCG :

• La date des dernières règles
• Suspicion de GEU
• Suivi post IVG/ITG ou fausse couche

En cas de dosage de médicament :

• Le poids, la taille du patient
• La raison de la prescription (efficacité/toxicité)
• La date de la mise en place du traitement ou de la dernière modification de posologie
• Les renseignements posologiques
• Pour les antibiotiques : le type de dosage (pic sérique ou taux résiduel)

En cas de mesure de l’INR d’un patient sous AVK :

• Le nom du médicament
• La cible en INR

En cas de mesure de l’héparinémie :

• Date, heure et dose de la dernière injection
• Nom du médicament

En cas de mesure du TCA:

• La notion de traitement à l’héparine ou HBPM

En cas de prélèvement bactériologique/mycologique/parasitologique :

• La notion de terrain favorisant : diabète, immunodépression, prélèvement post chirurgical
• Préciser si le patient est sous antibiothérapie, si oui préciser le traitement
• La notion de voyage en pays étranger et/ou zone tropicale
• En hospitalier préciser si le prélèvement est à visée diagnostique ou portage

En cas de prélèvement hématologique :

• La notion de traitement à l’héparine ou HBPM pour le dosage de plaquettes
• L’indication d’une hémopathie connue
• La notion de traitement anticancéreux

En cas de prélèvement immunohématologique :

• La notion d'injection de Rophylac
• La notion de transfusion récente

En cas de prélèvement de gaz du sang :

• Prélèvement : artériel/ veineux
• Patient : sous respirateur(si oui FiO2…), sous O2(si oui Débit…), VNI(si oui FiO2…), post VNI, en air
• Température

Il est impératif de fournir les renseignements cliniques mentionnés ci-dessus. Dans le cas d’un dosage pour évaluer la toxicité du médicament le prélèvement doit être fait sans attendre quel que soit le moment de la dernière prise. Dans le cas d’un dosage pour évaluer l’efficacité du médicament il est indispensable de respecter deux consignes : attendre l’équilibre du taux sanguin après toute modification posologique (ce délai dépend de la demi-vie de chaque molécule) et respecter le délai préconisé après la dernière prise.

Médicament	Délai d’équilibre (à posologie constante)	Délai de prélèvement
DEPAKINE	2-3 jours	Immédiatement avant une nouvelle prise de préférence à la même heure (min 6h après l’administration de la dernière dose)
LITHIUM	5 jours	Avec TERALITHE 250 mg, (forme à libération immédiate) : 12 heures après la dernière prise. Avec TERALITHE LP 400 mg, (forme à libération prolongée), 12 ou 24 heures après la dernière prise.
DIGOXINE	5-7 jours	Avant dose suivante (min 8h après l’administration de la dernière dose)
AMIKACINE	-	Taux résiduel : Juste avant injection Taux au pic : à 30 min après la fin de la perfusion
GENTAMICINE	-	Taux résiduel : Juste avant injection Taux au pic : à 30 min après la fin de la perfusion
VANCOMYCINE	24h	Taux plateau : 24 heures après le début de la perfusion continue
CARBAMAZEPINE	7-12 jours	Immédiatement avant une nouvelle prise et toujours à la même heure (min 6h après l’administration de la dernière dose)
PHENOBARBITAL	15-25 jours	Etant donné la longue demie vie du phénobarbital, le moment du prélèvement n’est pas très important ; cependant pour effectuer des mesures comparatives, il est nécessaire de respecter le même horaire de prélèvement pour un patient donné
TACROLIMUS	2-3 jours	Avant dose suivante (min 8h après l’administration de la dernière dose)
CICLOSPORINE	2-3 jours	Avant dose suivante (min 8h après l’administration de la dernière dose)
HBPM Curatif	-	2 injections / jour : 3 à 4 h après injection 1 injections / jour : 4 à 6 h après injection
HBPM Préventif	-	1 injections / jour : 3 à 4 h après injection
Héparine standard	-	2 injections / jour : 6 h après injection 3 injections / jour : 4 h après injection Injection en continue : 6 h après mise en place ou changement de posologie puis n’importe quelle heure
AVK	24 à 48 h (selon délai d’action du produit)	De préférence toujours à la même heure

La question aux patients « êtes-vous bien à jeun ? » est incomplète et ne permet pas de s’assurer de la durée du jeûne.

Pour s’assurer que les conditions préanalytiques de jeûne ont été respectées par le patient :

• Poser la question : à quelle heure avez-vous bu ou mangé pour la dernière fois ?
• Ne pas tenir compte de l’eau, du thé ou du café sans sucre et du fait d’avoir fumé.Sauf mention de jeûne strict.
• Calculer la période de jeûne et vérifier la compatibilité avec les conditions prévues en fonction des analyses à réaliser

Le non-respect des conditions préanalytiques entraine le refus systématique d’analyser l’échantillon.Les critères de refus du laboratoire sont les suivants :

• Prélèvement coagulé
• Chimie urinaire impraticable sur prélèvement boraté
• Patient non à jeun
• Non-respect du protocole (heure de prélèvement, régime, position couché/debout…)
• Prélèvement manquant
• Quantité insuffisante (ou tube trop rempli)
• Conditions de transmission : température et/ou délai
• Prélèvement de bactériologie : récipient non conforme ou endommagé
• Prélèvement de bactériologie : échantillon visiblement contaminé
• Prélèvement incomplet des urines de 24H
• Tubes périmés
• Tout problème d’identification pour lequel le préleveur ne peut affirmer avec certitude l’identité
• Absence règlement ou de signature du devis pour une analyses hors nomenclature

L'ordonnance doit comporter :

• Nom, numéro FINESS, adresse, numéro de téléphone et/ou de fax du prescripteur, et/ou l’établissement de soin lié.
• Date de la prescription.
• Nom et prénom du patient (si absence demander au patient de l’inscrire).
• Analyses demandées.
• Signature du prescripteur.

Une ordonnance n'a pas de durée de validité légale, mais les organismes de Sécurité Sociale et les mutuelles ne prendront en charge (facturation) que les prescriptions ayant moins de 2 ans et 1 trimestre. Une ordonnance ne peut servir qu'une fois sauf si le prescripteur a indiqué de manière claire qu'elle est renouvelable.

Certains examens nécessitent des formulaires de demande spécifique complétés par le médecin et confiés au patient pour son examen. Ces derniers doivent être acheminés en même temps que le prélèvement au laboratoire. Les formulaires vierges sont disponibles par simple appel au laboratoire ou sur le site internet du laboratoire Biomnis.

Il s’agit essentiellement des examens suivants :

• marqueurs sériques pour l'estimation du risque de trisomie 21 fœtale
• diagnostic anté natal
• cytogénétique et génétique moléculaire
• plombémie chez une personne mineure

Les prélèvements doivent systématiquement être transmis au laboratoire dans un emballage individuel (boite de transport ou sachet) accompagné du bon de prélèvement et de l’ordonnance. Le transport est réalisé soit par l’infirmière libérale jusqu’aux points de collecte (cabinets infirmiers, pharmacies, laboratoire), soit par nos soins, soit par la société de transport affrétée par le laboratoire dans le respect du décret sur le transport de marchandises dangereuses par route dit ADR 2003. L’ensemble des échantillons sauf mentions particulières annotées sur le référentiel des analyses sera conservé à température ambiante et transmis au laboratoire le jour même.

Elle comporte impérativement les résultats de 2 déterminations résultant de 2 actes de prélèvements différents, à deux moments distincts, effectués de préférence par deux personnes différentes (les 2 prélèvements peuvent toutefois être exécutés le même jour).

Sur les résultats de chacune des déterminations doivent apparaître :

• Le groupe ABO rhésus avec le phénotype rhésus Kell
• Le nom de naissance
• Le (ou les) prénom(s)
• Le nom d’usage (si cette information manque car le groupe a été réalisé avant le mariage : la carte est valable)
• Le sexe
• La date de naissance
• L’identité du laboratoire, son adresse et téléphone, le nom du biologiste avec sa signature
• La date de réalisation des examens
• Le code EFS ou code ERA

Les 2 déterminations portées sur la carte doivent avoir été effectuées par le même laboratoire →

→ Tout document ne comportant pas l’ensemble de ces mentions ou avec une erreur est invalide et doit impérativement être détruit.

Nous fournissons l'ensemble du matériel nécessaire à l’exécution des prélèvements. Les tubes, les aiguilles, lingettes désinfectantes, écouvillons et autres matériels de prélèvement ont une date de péremption.Nous fournissons systématiquement des matériels avec une péremption longue. Il est de la responsabilité de chaque professionnel de vérifier les dates de péremption indiquées avant utilisation. Sauf mention particulière le matériel fourni se conserve à température ambiante. Les tubes de coagulation se conservent à l’abri de la lumière ; ils doivent être laissés dans les boites. Un bon de commande de matériel est à votre disposition dans l’onglet : « Prélèvements réalisés par un professionnel ».

Les aiguilles souillées ne doivent être ni « re-capuchonnées », ni replacées dans les boîtes de prélèvements. Elles sont éliminées immédiatement après le prélèvement dans un container conforme aux normes lui-même éliminé avec les DASRI. Les corps de prélèvements à usage unique doivent être jetés après chaque utilisation avec les déchets classés ordures ménagères sauf s’ils sont souillés par du sang. Ils sont alors considérés comme DASRI. L’élimination des DASRI est de la responsabilité de chaque professionnel. Nous ne pouvons accepter de collecter ou d’éliminer de tels déchets.

Les biologistes des différents sites pharmaciens ou médecins, sont à la disposition des professionnels de santé pour les renseigner notamment sur les indications médicales et/ou le choix des méthodes disponibles.

Les échantillons analysés sont gardés un jour plein après la réalisation de l’examen. Ils servent simplement à vérifier les identités en cas de contestation avant d’être détruits. Les ajouts d’analyses, demandés par le prescripteur sont soumis à autorisation du biologiste.